panduan skill lab-mikrobiologi kompilasi final

7/25/2019 Panduan Skill Lab-Mikrobiologi Kompilasi Final

1/20

1

PEMERIKSAAN JAMUR (KOH)

1. Tujuan Belajar

a.

Mahasiswa mengetahui persiapan dan cara pengambilan spesimen untuk pemeriksaan

KOH

b.

Mahasiswa mampu melakukan pemeriksaan KOH

c.

Mahasiswa mampu menginterpretasikan hasil pemeriksaan KOH

2. Dasar Teori

Pemeriksaan menggunakan Kalium Hidroksida (KOH) dari kerokan kulit merupakan

prosedur sederhana yang paling sering dilakukan untuk mendiagnosis infeksi jamur pada

kulit, kuku dan rambut. Kalium Hodroksida mampu melisiskan sel epitel yang terinfeksi

sehingga bentuk infektif dari jamur keluar dari dalam sel dan dapat diamati.Pengaturan cahaya pada saat pemgamatan di bawah mikroskop merupakan aspek yang

cukup penting untuk diperhatikan. Kalium hidroksida bukanlah zat warna sehingga tampilan

di lapang pandang mikroskop akan tampak berwarna putih, sehingga pencahayaan harus

diesuaikan agar morfologi bentuk infektif jamur dapat diamati dengan baik. Pemeriksaan ini

dapat dimodifikasi dengan melakukan penambahan sejumlah zat warna seperti tinta parker,

eosin 1%, calcofluor white ataupun penambahan tinta parker dan eosin 1% dengan

perbandingan 2:1. Penambahan zat warna ini bertujuan untuk mempermudah visualisasi di

bawah mikroskop.

3.

Alat dan Bahan

Alat:

Scalpel

Kaca objek

Cover glass

Mikroskop

Lampu Bunsen

Bahan:

Spesimen kerokan kulit, kuku, kulit kepala atau rambut

Larutan KOH 10% (untuk kulit) dan 20% untuk kuku atau rambut

4. Prosedur Kerja

A. Persiapan pengambilan spesimen

Sebelum pemeriksaan dilakukan, pasien harus dipastikan tidak sedang mengkonsumsi

atau menggunakan obat antijamur minimal 3 hari sebelum pemeriksaan. Penggunaan obat-


2/20

2

obatan ini akan dapat mempengaruhi hasil pemeriksaan. Jika terdapat lesi yan

banyak/multipel, maka spesimen kerokan kulit diambil dari lesi yang paling baru sehingga

diperoleh hasil yang lebih representatif. Pada pemeriksaan ini, jumlah kerokan kulit harus

cukuo untuk dapat diperiksa dan diinterpretasikan. Oleh sebab itu kepada pasien disarankan

untuk tidak melakuakan scrubbing atau menggunakan krim/lotion pada daerah lesi agar

diperoleh spesimen kerokan kulit yang cukup beberapa hari sebelum pemeriksaan.

B. Pengambilan spesimen

Prosedur pengambilan spesimen adalah sebagai berikut:

1. Kerokan kulit

Bagian lesi dan kulit di sekitarnya dibersikan dengan kapas/swab alcohol

Kerok bagian tersebut menggunakan scalpel. Scalpel dan kulit membentuk sudut yang

tumpul (biasanya 45) untuk menghindari perlukaan.

Kerokan kulit ditampung di tempat yang bersih, lalu diperiksakan

2. Kerokan/potongan kuku

Kuku dibersihkan dengan kapas/swab alcohol

Kerokan kulit dapat diambil di beberapa tempat (Gambar)

Kerokan kulit diambil menggunakan scalpel secara perlahan sehingga diperolah

debris keratin kuku yang berwarna putih

Spesimen juga dapat berupa potongan guntingan kuku yang terinfeksi

Kerokan/potongan kuku ditampung di tempat yang bersih, lalu diperiksakan

Gambar 1. Lokasi pengambilan spesimen kuku

(Sumber: http://www.bpac.org.nz)

3.

Spesimen rambut

Rambut yang terinfeksi dicabut menggunakan pinset

Lesi di rambut dikerok menggunakan scalpel

Kerokan ditampung di tempat yang bersih, lalu diperiksakan


3/20

3

C. Pembuatan sediaan KOH

1.

Kerokan kulit diletakkan di atas kaca objek yang bersih

2. Beberapa tetes KOH 10% ditambahkan pada kerokan kulit, lalu ditutup dengan cover

glass secara perlahan

3.

Preparat dipanaskan sebentar saja di atas api Bunsen. Pemanasan tidak boleh membuat

larutan KOH mongering.

4. Preparat diamati di bawah mikroskop dengan lensa objektif 10X, lalu dilanjutkan dengan

lensa objektif 40X. Pencahayaan disesuaikan agar pengamatan dapat dilakukan lebih

jelas.

D. Interpretasi hasil pemeriksaan

Dari pemeriksaan KOH dapat diperoleh hasil sebagai berikut:

Pada dermatofitosis atau kandidiasis kulit tampak gambaran hifa atau pseudohifa dengan

budding cell

Gambar 2. Hifa dan pseudohifa dengan budding cell

(Sumber: http://www.mtnstopshiv.org)

Pada dermatofitosis pada rambut tampak gambaran spora (arthrospora) di dalam filament

rambut (endothrix) atau di luar filament rambut (ectothrix)

Gambar 3. Arthospora di luar filament rambut (Ectothrix)

(Sumber: Abdo et al, 2011)


4/20

4

Gambar 4. Arthospora di dalam filament rambut (Endothrix)

(Sumber: Abdo et al, 2011)

Pada dermatofitosis atau infeksi Candida pada kulit tampak gambaran hifa atau

pseudohifa dengan budding cell

Pada Ptyriasis versicolor tampak gambaran spaghetti and meatball appearance, yang

merupakan gambaran hifa dan spora dariMallasezia furfur

Gambar 5. Spaghetti and meatball appearancepada Ptyriasis versicolor

(Sumber: Dokumentasi Lab.Mikrobiologi FK Unsyiah)

5. Check List

NoAspek Yang Dinilai

Skor

0 1 2 3

I Persiapan pengambilan spesimen

1 Pasien diminta untuk tidak menggunakan obat

antijamur minimal 3 hari sebelum pemeriksaan

serta tidak menggunakan lotion/krim atau

melakukanscrubbingdi daerah lesi beberapa

hari sebelum pemerikaan

2 Jika terdapat lesi multipel, maka spesimen

diambil dari lesi yang baru terbentuk


5/20

5

Keterangan :0 : Tidak dilakukan1 : Dilakukan, tetapi kurang benar (kesalahan > 50%)

2 : Dilakukan, tetapi kurang benar (kesalahan < 50 %)3 : Dilakukan dengan benar

% cakupan penguasaan keterampilan : Skor total/39 x 100% = %

II Pengambilan spesimen kerokan kulit

1 Kulit di sekitar lesi dibersihkan menggunakan

kapas/swab alkohol

2 Kulit dikerok menggunakan scalpel secara

perlahan dengan kemiringan membentuk suduttumpul (45) dengan kulit

3 Kerokan kulit ditampung di wadah yang bersih

III Pembuatan sediaan KOH

1. Siapkan kaca objek yang bersih, lalu ambil

secukupnya spesimen kerokan kulit dan

letakkan di bagian tengan kaca objek

2. KH 10% ditambahkan di atas kerokan kulit

lalu ditutup dengan cover glass

3. Preparat dipanaskan sebentar di atas api

Bunsen namun larutan KOH tidak boleh

sampai kering

4. Pengamatan dilakukan di bawah mikroskop

menggunakan lensa objektif 10x dan

dilanjutkan ke 40X

IV Interpretasi hasil

1 Pada dermatofitosis atau kandidiasis kulit

tampak gambaran hifa atau pseudohifa dengan

budding cell

2 Pada Ptyriasis versicolor tampak gambaran

spaghetti and meatball appearance,


6/20

6

SEDIAAN BASAH

1.

Tujuan Belajar

a. Mahasiswa mengetahui persiapan dan cara pengambilan spesimen sekret vagina

(vaginal discharge/fluor albus)

b.

Mahasiswa mampu membuat sediaan basah

c. Mahasiswa mampu menginterpretasikan hasil pemeriksaan

2. Dasar Teori

Sediaan basah (wet mount) adalah bentuk pemeriksaan mikroskopis untuk

mendiagnosis penyebab vaginal discharge atau fluor albus. Vaginal discharge dapat

disebabkan oleh vaginosis bakterialis (mencapai 70% kasus akibat infeksi), kandidiasis

vulvovaginalis dan trikomoniasis. Secara makroskopis, spesimen swab vagina pada vaginal

discharge yang disebabkan oleh ketiga penyebab di atas dapat dibedakan sebagai berikut:

Kandidiasis vulvovaginalis yang disebabkan oleh jamur Candida albican, akan

menimbulkan vaginal dischargeyang kental, berwarna putih dan tampak seperti keju

Trikomoniasis atau infeksi Trichomonas vaginalis akan menimbulkan vaginal discharge

yang berwarna kuning kehijauan, berbusa dan berbau busuk

Vaginosis bakterialis yang dapat disebabkan oleh bakteri anerob seperti Gardnerella

vaginalis, Prevotella,PeptostreptococcusdanBacteroidesspp, akan menimbulkan

vaginal dischargeyang berwarna putih susu dan berbau amis (fishy odor).

Meskipun ketiga etiologi di atas merupakan penyebab yang paling dominan, namun

vaginal dischargejuga dapat disebabkan oleh kelainan non infeksi. Oleh sebab itu penegakan

diagnosis harus dilakukan secara komperehensif, meliputi anamnesis dan pemeriksaan fisik

yang baik serta didukung oleh pemeriksaan penunjang seperti pengukuran pH sekret vaginadan pemeriksaan mikroskopis.

Pada pembuatan sediaan basah, spesimen vaginal discharge diletakkan di atas kaca

objek lalu dicampurkan dengan larutan Salin atau NaCl 0.9% dan KOH 10%. Larutan salin

bersifat fisiologis sehingga integritas membran dan pergerakan/motilitas (sperma, protozoa)

tidak terganggu dan bisa diamati. Larutan salin sangat baik untuk mengamati sejumlah

bakteri berbentuk batang (Lactobacillus pada sekret vagina normal, motilitas trikomonas

pada trikomoniasis atau taburan atau perselubungan bakteri di permukaan epitel vagina

(yang dikenal dengan Clue cells) yang khas pada vaginosis bakterialis. Jika dicurigai


7/20

7

sebagai infeksi jamur, maka penambahan KOH 10% pada spesimen vaginal dischargeakan

memberikan gambaran yang jelas dari sel budding (yeast bud) dan pseudohifa. Kalium

Hidroksida (KOH) mampu melisiskan dinding sel bakteri, trikomonas, sel darah dan sel epitel

vagina, namun jamur akan tetap intak sehingga dapat diamati. Pada kasus vaginosis

bakterialis dan trikomoniasis, penambahan KOH 10% pada spesimen akan menimbulkan bau

amis yang khas (fishy odor).Uji ini dikenal dengan Whiff test.

3. Alat dan Bahan

Alat:

Spekulum

Kapas lidi steril atau spatula

Mikroskop

Kaca objek

Cover glass

Bahan:

Spesimen vaginal discharge

Larutan NaCl 0,9%

Kalium Hidroksida 10%

4. Prosedur Kerja

A. Persiapan pengambilan spesimen

Pemeriksaan ini diindikasikan pada pasien wanita dengan keluhan vaginitis seperti rasa

gatal, sensasi terbakar/panas, kemerahan serta adanya vaginal discharge/fluor albus yang

berbau. Sebelum pengambilan spesimen dilakukan, sangat penting untuk dipastikan hal

sebagai berikut:

1. Pasien tidak boleh dalam keadaan menstruasi

2.

Pasien tidak boleh menggunakan cairan pembasuh vagina minimal 3 hari sebelum

pemeriksaan

3. Pasien tidak boleh menggunakan tampon 24 jam sebelum pemeriksaan

4.

Pasien tidak boleh menggunakan obat-obatan dalam bentuk vaginal suppositoria

(biasanya untuk jamur) minimal 3 hari sebelum pemeriksaan


8/20

8

B. Pengambilan Spesimen

Prosedur pengambilan spesimen adalah sebagai berikut:

1. Pasien berbaring di atas meja pemeriksaan dalam posisi litotomi, lalu dipasangkan

spekulum

2.

Spesimen vaginal discharge diambil menggunakan kapas lidi steril atau spatula.

Spesimen dapat diambil dari mukosa bagian posterior vagina atau dari cairan discharge

yang keluar.

3. Swab yang diambil tidak boleh kering (harus segera diproses).

4. Pembuatan Sediaan Basah

5. Siapkan kaca objek yang bersih

6.

Ambil secukupnya spesimen vaginal dischargemenggunakan swab/kapas lidi steril, lalu

diletakkan di kedua bagian ujung kaca objek (seperti gambar di bawah)

7. Tambahkan larutan salin dan KOH 10% pada masing-masing ujung kaca objek yang telah

dibubuhi spesimen, lalu dicampur merata

8. Kedua sediaan ditutupi dengan cover glass. Penutupan dilakukan secara perlahan dan

hati-hati untuk menghindari terbentuknya gelembung udara

9.

Pengamatan dilakukan di bawah mikroskop menggunakan lensa objektif 10x dan

dilanjutkan ke 40X. Pengamatan dapat dilakukan menggunakan lensa objektif 10X,

namun konfirmasi menggunakan lensa objektif 40X sangat penting dilakukan karena

sejumlah debris dan artefak yang terdapat di dalam spesimen (rambut, serat atau

gelembung udara).

C. Interpretasi Hasil Pemeriksaan

Pada preparat dengan larutan salin diamati sejumlah hal berikut:

Sekret vagina normal: bakteri berbentuk batang (Lactobacillus), sel epitel vagina, tidak

dijumpai leukosit


9/20

9

Vaginosis bakterialis: clue cells berjumlah >20 sel, tidak ada atau dijumpai sedikit

leukosit. Clue cells adalah sel epitel skuamous vagina yang diselubungi oleh bakteri

patogen Gardnerella vaginalisyang berbentuk coccobacilli.

Trikomoniasis: Trikomonas dan pergerakannya serta dijumpai banyak leukositPada preparat dengan KOH 10% dapat diamati budding yeast, pseudohifa atau spora pada

infeksi jamur non-Candida serta sedikit leukosit yang menunjukkan kandidiasis

vulvovaginalis.

Hasil pemeriksaan yang diperoleh melalui sediaan basah dapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1. Penilaian/interpretasi hasil pemeriksaan sediaan basah

Sumber: Billater dan Dunn, 2014

5. Check List


Skor

0 1 2 3

I Persiapan pengambilan specimen vaginal

discharge

Pasien diberikan informasi mengenai sejumlah hal

berikut:Tidak boleh dalam keadaan menstruasi, tidak


10/20

10

menggunakan pembasuh vagina minimal 3 hari

sebelum pemeriksaan, tidak menggunakan tampon

minimal 24 jam sebelum pemeriksaan serta tidak

menggunakan obat-obatan (vaginal suppositoria)

minimal 2-3 hari sebelum pemeriksaan.

II Pengambilan spesimen vaginal discharge

1 Pasien berbaring di atas meja pemeriksaan

dalam posisi litotomi, lalu dipasangkan

spekulum

2 Spesimen vaginal dischargediambil

menggunakan kapas lidi steril atau spatula.

Spesimen dapat diambil dari mukosa bagian

posterior vagina atau dari cairan discharge

yang keluar.

3 Swab yang diambil tidak boleh kering (harus

segera diproses)

III Pembuatan sediaan basah

1. Siapkan kaca objek yang bersih, lalu ambil

secukupnya spesimen vaginal discharge

menggunakan swab/kapas lidi steril, lalu

diletakkan di kedua bagian ujung kaca objek

2. larutan salin dan KOH 10% ditambahkan pada

masing-masing ujung kaca objek yang telah

dibubuhi spesimen, lalu dicampur merata

3. Kedua sediaan ditutupi dengan cover glass.

Penutupan dilakukan secara perlahan dan hati-

hati untuk menghindari terbentuknya

gelembung udara

4. Pengamatan dilakukan di bawah mikroskop

menggunakan lensa objektif 10x dan

dilanjutkan ke 40X

IV Interpretasi hasil

1 Pada saat penambahan KOH 10% akan muncul

bau amis (fishy odor),maka dilaporkan

sebagai Whiff test positif

2 Sekret vagina normal: bakteri berbentuk

batang (Lactobacillus), sel epitel vagina, tidak

dijumpai leukosit

3 Vaginosis bakterialis: clue cellsberjumlah >20

sel, tidak ada atau dijumpai sedikit leukosit.Clue cellsadalah sel epitel skuamous vagina


11/20

11

yang diselubungi oleh bakteri patogen

Gardnerella vaginalisyang berbentuk

coccobacilli.

4 Trikomoniasis: Trikomonas dan

pergerakannya serta dijumpai banyak leukosit5 Kandidiasis vulvovaginalis: budding yeast,

pseudohifa atau spora pada infeksi jamur non-

Candidaserta sedikit leukosit

Keterangan :0 : Tidak dilakukan1 : Dilakukan, tetapi kurang benar (kesalahan > 50%)2 : Dilakukan, tetapi kurang benar (kesalahan < 50 %)3 : Dilakukan dengan benar



12/20

12

GRAM STAINING

1. Tujuan Belajar

a. Mahasiswa mampu membuat preparat dari biakan bakteri dari media padat dan dari

media cair

b.

Mahasiswa mampu melakukan pewarnaan gram dengan benar

c. Mahasiswa mampu menginterpretasi hasil pewarnaan Gram dari pengamatan dengan

mikroskop

2. Dasar Teori

Bakteri berukuran sangat kecil dan tipis sehingga sukar dilihat strukturnya walaupun

dengan bantuan mikroskop. Untuk melihat morfologi bakteri secara lebih jelas dikembangkan

teknik pewarnaan bakteri. Prinsip pewarnaan bakteri adalah pertukaran antara ion zat warna

dengan ion protoplasma sel. Ada dua kelompok zat pewarna bakteri.(1) bersifat asam, berupa

anion dan umum digunakan dalam bentuk garam natrium. (2) bersifat alkalis, berupa kation

dan umum digunakan dalam bentuk klorida. Selain zat warna diperlukan zat tambahan yangberfungsi untuk mengendapkan hasil rekasi zat warna dengan komponen dinding sel bakteri.

Dengan pewarnan dapat diamati struktur sel bakteri atau salah satu dari bagian dari

struktur sel bakteri. Salah satu pewarnaan kuman yang paling banyak digunakan adalah

pewarnaan Gram. Pewarnaan Gram ini harus dikuasai oleh mahasiswa.

Kepentingan klinik yang dapat diperoleh dengan pewarnaan Gram adalah untuk:

1. Penggolongkan bakteri ke dalam dua kelompok besar yaitu bakteri Gram positif atau

Gram negatif. Hal ini diperlukan untuk kepentingan indentifikasi bakteri penyebab infeksi.

2. Membantu penentuan pemilihan antibiotika sesuai dengan golongan bakteri penyebab

infeksi

Pewarnaan Gram pertama diperkenalkan oleh Hans Christian Gram (Denmark) pada

tahun 1884. Pewarnaan ini banyak sekali digunakan di laboratorium mikrobiologi sebagai

salah satu langkah dalam identifikasi bakteri. Dengan pewarnaan ini bakteri dapat

dikelompokkan ke dalam dua golongan yaitu kelompok bakteri Gram negatif (bakteri

berwarna merah) dan kelompok bakteri Gram positif (bakteri berwarna ungu). Menurut

Talaro KP and Talaro A. (2012) Perbedaan sifat tersebut disebabkan adanya perbedaan barier


13/20

13

dinding sel bakteri terhadap penetrasi kompleks jodium-kristal violet setelah pewarnaan

tersebut difiksir oleh bahan mordant (larutan jodium/lugol). Prinsip kerja dan prosedur

pewarnaan Gram dapat dilihat pada gambar 6.

Gambar 6. Prinsip kerja dan prosedur pewarnaan Gram

(Sumber: Tortora et.al 2010)

Pada bakteri Gram positif, zat warna kristal violet difiksir oleh yodium pada dinding

sel kuman dan ketika mengalami pencucian dengan larutan alkohol zat tersebut tetap melekatpada diding sel. Sedangkan pada kuman Gram negatif, Jodium tadi tidak dapat memfiksir zat

warna kristal violet pada dinding sel, sehingga ketika dilakukan pencucian dengan alkohol zat

warna tersebut keluar kembali dan hanya zat warna terakhir yaitu methyl red atau safranin

yang berwarna merah yang melekat pada dinding sel (Gambar 7)

Gambar 7. Perbedaan struktur dinding sel bakteri Gram poitif dan negatif


14/20

14

(Sumber:http://micro.digitalproteus.com/morphology2.php)

Beberapa bakteri yang tergolong Gram postif dan Gram negatif serta penyakit yang

ditimbulkannya dapat dilihat pada tabel 2.

Tabel 2. Beberapa genus bakteri berdasarkan pewarnaan Gram dan penyakit yangditimbulkannya

Sumber: Diadaptasi dari Jawets et al, 2005

3. Alat dan Bahan

Alat:

Kaca objek

Penjepit kaca objek

Lampu Bunsen

Ose

Mikroskop
http://micro.digitalproteus.com/morphology2.phphttp://micro.digitalproteus.com/morphology2.php


15/20


16/20

16

tidak terlalu tebal ataupun tidak terlalu tipis

Keringkan sediaan itu di udara, sedangkan ose-nya dipijarkan kembali agar steril

Fiksasilah sediaan dengan melewatkan objek gelas di atas lidah api beberapa kali

yang bertujuan untuk sediaan menempel kuat pada permukaan objek gelas. Sediaan siap diwarnai

B. Pewarnaan Gram

1.Tuangkan kristal violet pada objek gelas dan biarkan selama 1 menit setelah itu bilas

dengan air.

2. Tuangkan lugol pada objek gelas dan biarkan selama 1 menit setelah itu bilas dengan air.


17/20

17

3. Lunturkan dengan alkohol 96% selama 5-10 detik sampai zat warna hilang, setelah itu

bila dengan air

4. Tuangkan larutan safranin pada objek gelas dan biarkan selama 30-60 detik setelah itu

bilas dengan air.


18/20

18

5. Keringkan dengan kertas pengering, setelah itu tetesi sediaan itu dengan minyak emersi

lalu amati di bawah mikroskop dengan lensa objektif pembesaran 100 kali

5. Check List


Skor

0 1 2 3

I. Pembuatan Preparat

1. Menyiapkan kaca objek

2. Memijarkan ose dengan posisi tegak lurus dan

mengambil aquades dengan melewatkan mulut

tabung aquades dekat api

3. Meletakkan aquades steril pada kaca objek

4. Memijarkan lagi ose dengan posisi tegak lurus

dan mendinginkan sebentar

5. Mengambil sedikit biakan bakteri dengan osedan melewatkan petridisc dekat api.

6. Mencampur dan melebarkan sediaan dengan

ose pada kaca objek dan kemudian

mensterilkan ose

7. Mengeringkan sediaan dengan melewatkan

sediaan 3-4 kali diatas lidah api (fiksasi)

II. Pewarnaan Gram

1. Menuangkan kristal violet pada sediaan dan

membiarkan selama satu menit lalu membilasdengan air


19/20

19

2. Menuangkan lugol pada sediaan dan

membiarkan selama satu menit lalu membilas

dengan air

3. Melunturkan dengan alkohol 96% selama 5-10

menit lalu bilas dengan air.4. Menuangkan safranin pada sediaan dan

membiarkan selama 30-60 detik lalu membilas

dengan air

5. Mengeringkan sediaan dengan kertas

pengering setelah itu menetesi sediaan dengan

minyak emersi

6. Mengamati sediaan di bawah mikroskop

dengan pembesaran 10x100 dan melaporkan

hasil pengamatan

Keterangan :0 : Tidak dilakukan1 : Dilakukan, tetapi kurang benar (kesalahan > 50%)2 : Dilakukan, tetapi kurang benar (kesalahan < 50 %)3 : Dilakukan dengan benar



20/20

20

DAFTAR PUSTAKA

Collecting Specimen for Investigation of Fungal Infection. 2011. Available athttp://www.bpac.org.nz.

Kurade SM, Amladi SA and Miskeen A. 2006. Skin scrapping and potassium hydroxide mount.

Indian Journal of Dermatology, Veneorology and Leprology. 72 (3): 238-241

Billater L and Dunn ST. 2014. Vaginal wet prep procedures. Country Health Department LaboratoryProcedure. Available at:http://www.ok.gov/health2/documents/2014%20Vaginal%20Wet%20Prep%20Procedure%2004-22-

2014.pdf

Training Instruction for Reading KOH Wet Preps for MTN studies. Available athttp://www.mtnstopshiv.org/sites/default/files/attachments/Training_KOH

Abdo HM, Abdel-Hamed MR, Al-Hosiny IM. 2011. The Gulf Journal of Dermatology andVenereology.18(1): 34-39.

Khan KJ, Shah R , Gautam M, Patil S. 2007. Clue cells. Indian J Sex Transm Dis.28:108-109

Turovskiy Y, Noll KS, Chikindas ML. The aetiology of Bacterial Vaginosis. 2011. Journal of AppliedMicrobiology. 110:11051128

Patrict R. Muray; Ellen JO. Baron. James H. Jurgensen; Michael A. Pfeller and Robert. H.

Yolken 2003. Mannual Clinical Microbiology 8th American Society for

Microbiology. Washinton. DC

Talaro KP and Talaro A. 2012. Foundations in Microbiology.McGrawHill. San Francisco.

Tortora GJ, Funke BR and Case CL. 2010. Microbiology.10th Edition.San Francisco Pearson

Benjamin Cummings

Albert Ballows; William J. Hausler JR. Kenneth L. Herrman; Henry D. Isenberg and H.Jean

Shadomy. 1991. Mannual Clinical Microbiology 4th . American Society for

Microbiology. Washinton. DC

Kenneth J. Ryan 2004. Sherirs Medical Microbiology: An Introduction to Infection

Disease,. Printice Hall International Inc. USA

Geo F. Brooks; Janet S. Butel and L. Nicholas Ornston. 2002.Jawetz, Melnictk and Edelbers

Medical Microbiology 21st . Appleton & Lange. Connecticut.

Joklik, JK; Willet, HP; Amos, DB. 1992.Zinsser Microbiology. 20thed. Churchill

Livingstone. New York. P 516-522.
http://www.bpac.org.nz/http://www.mtnstopshiv.org/sites/default/files/attachments/Training_KOHhttp://www.mtnstopshiv.org/sites/default/files/attachments/Training_KOHhttp://www.bpac.org.nz/

panduan skill lab-mikrobiologi kompilasi final

Documents